МЕТОДИКА

Температуру в трубках, за исключением инкубационных петель, поддерживают на уровне 15,0 °C. В трубки аппарата, используя насос, подают суспензию эритроцитов со скоростью 0,1 мл/мин и раствор 3 г/л метилцеллюлозы 450 P со скоростью 0,05 мл/мин. В течение 2 мин со скоростью 0,1 мл/мин вводят растворы испытуемого и стандартного образцов в соответствующих разведениях. Перед введением каждого следующего раствора в течение 4 мин вводят разбавитель со скоростью 0,1 мл/мин.

Вводят воздух со скоростью 0,6 мл/мин. Инкубируют при температуре 37 °C в течение 18 мин, после чего разбивают скопления эритроцитов путем введения со скоростью 1,6 мл/мин раствора 9 г/л натрия хлорида P, содержащего для предотвращения разрушения агрегированных эритроцитов подходящий смачивающий агент (например, полисорбат 20 P до получения концентрации 0,2 г/л). После оседания агглютинатов образовавшуюся суспензию дважды декантируют: вначале - со скоростью 0,4 мл/мин, затем - со скоростью 0,6 мл/мин. Не подвергшиеся агглютинации эритроциты лизируют раствором, содержащим 5 г/л октоксинола 10 P, 0,2 г/л калия феррицианида P, 1 г/л натрия гидрокарбоната P и 0,05 г/л калия цианида P, подаваемым со скоростью 2,5 мл/мин. В течение десяти минут обеспечивают условия, необходимые для выхода гемоглобина. Оптическую плотность (2.1.2.24) гемолизата регистрируют непрерывно при длине волны от 540 нм до 550 нм. Определяют диапазон концентраций антител, в котором наблюдается линейная зависимость между концентрацией и полученным изменением оптической плотности (). Исходя из полученных результатов, строят калибровочную кривую, линейный участок которой используют для расчета активности испытуемого образца.

Активность испытуемого образца рассчитывают с использованием общепринятых статистических методов (2.3.12.0).