Оценка соблюдения обязательных требований, содержащихся в данном документе, привлечение к административной ответственности за их несоблюдение допускаются до 1 сентября 2025 года (Постановление Правительства РФ от 31.12.2020 N 2467).

1.4. Проведение исследований

Опыты проводят при оптимальной температуре и освещении, как и культивирование водорослей (п. 1.3 Приложения 3). Используют водоросли в экспоненциальной фазе роста, что соответствует трехсуточной культуре водорослей после пересева. Плотность культуры в колбе в это время достигает примерно 5 млн. кл/мл.

В опыте используют начальную плотность клеток 25 тыс. кл/см. Для этого нужная плотность клеток в опыте достигается расчетом, исходя из объема исследуемой концентрации вещества (например, 100 см3) и численности клеток в культуре в экспоненциальной фазе роста (5 млн. кл/см3). В указанном случае в опытную и контрольную среду добавляется по 0,5 см3 трехсуточной культуры водорослей.

Периодически (не реже 1 раза в месяц) необходимо проводить контроль

физиологической чувствительности водорослей. Для этого используют эталонное

химическое вещество - двухромовокислый калий K Cr O марки "хч" или

2 2 7

стандарт-титр калия двухромокислого. Готовят маточный раствор

двухромовокислого калия концентрацией 1 г/м3. Далее методом разбавления

готовят серию растворов с концентрациями 1,0; 2,5; 5,0; 7,5 и 10,0 мг/дм3.

Исследование проводят в течение 96 ч. На основании полученных результатов

рассчитывают среднюю концентрацию K Cr O , вызывающую уменьшение

2 2 7

численности клеток на 50% за 96 ч (ЛК за 96 ч). Если полученное значение

50

ЛК находится в интервале 5,8 - 10,0 мг/дм3, то культура водорослей может

50

быть использована для экспериментов.

Если полученные значения ЛК не попадают в интервал 5,8 - 10,0 мг/дм3,

50

то эксперименты с водорослями не проводят, выясняют причину (условия

культивирования, состав культуральной среды и прочее). Иногда культуру

водорослей заменяют и проводят эксперименты заново.

При постановке острых и хронических экспериментов в контрольные и опытные колбы емкостью 250 см3 наливают по 100 см3 (в колбы емкостью 100 см3 наливают по 50 см3) контрольной среды и исследуемые концентрации вещества. Контролем служит среда Гольдберга. Исследуемые концентрации веществ также готовят на среде Гольдберга.

Затем в опытные и контрольные колбы пипеткой добавляют по 0,5 см3 (0,25 см3) культуры водорослей в экспоненциальной фазе роста.

Колбы закрывают ватно-марлевыми пробками или фольгой, их содержимое тщательно перемешивают и в каждой колбе определяют исходную численность клеток, которая должна составлять 25 тыс. кл/мл. Колбы помещают в люминостат (или в климатостат) и экспонируют в течение трех суток (острый) или четырнадцати суток (хронический) эксперимент.

В эксперименте должно быть исследовано не менее 5 концентраций вещества. Повторность трехкратная.

Эксперименты на водорослях проводятся в 2 этапа: предварительный и основной (окончательный).

В предварительном остром эксперименте находят интервал токсичных концентраций. Опыты проводят в широком диапазоне концентраций вещества, которые отличаются в геометрической прогрессии (коэффициент 10). Например, 0,01; 0,1; 1,0; 10,0 мг/л и т.д. Исследуют не менее пяти концентраций в двух повторностях. По результатам эксперимента определяется диапазон концентраций для основного острого и хронического эксперимента.

В основном остром и хроническом эксперименте шаг между концентрациями различается в 2 - 5 раз. Исследуют не менее пяти концентраций в трех повторностях.

Подсчет клеток водорослей проводят в остром опыте ежедневно, в хроническом на 1, 2, 3, 4, 7, 10, 14 сутки.

На 14 сутки от начала эксперимента опыт прекращают и устанавливают, оказывают ли исследуемые концентрации вещества хроническое токсическое (или эвтрофирующее) действие на водоросли.